Capillaire elektroforese

Capillaire elektroforese (CE) is een analytische scheidingstechniek waarbij geladen deeltjes in een dunne, met buffer gevulde capillair worden gescheiden onder invloed van een sterk elektrisch veld. De techniek combineert de hoge scheidingsefficiëntie van elektroforese met de snelheid en automatisering van een instrumentele analyse. Capillaire elektroforese wordt toegepast voor de scheiding van ionen, eiwitten, DNA-fragmenten, geneesmiddelen en kleine organische moleculen, vaak met een resolutie die die van vloeistofchromatografie overtreft.

Werkingsprincipe capillaire elektroforese: capillair, elektroden, bufferreservoirs, elektro-osmotische flow en detector

Wat is capillaire elektroforese?

Bij capillaire elektroforese wordt een nauwe capillair (binnendiameter 25–100 µm, lengte 20–100 cm) gevuld met een geleidende buffer (achtergrondelektrolyt). De uiteinden van de capillair staan in twee bufferreservoirs, elk voorzien van een elektrode. Wanneer over de capillair een hoge spanning wordt aangelegd (10–30 kV), migreren geladen deeltjes door de capillair op basis van hun lading en grootte. Een detector bij het uiteinde van de capillair registreert de deeltjes naarmate ze passeren, wat resulteert in een elektroferogram: een grafiek van detectorsignaal tegen migratietijd. Elke piek in het elektroferogram correspondeert met een afzonderlijke component; de migratietijd dient als kwalitatieve identificatie en de piekoppervlakte of ‑hoogte als kwantitatieve maat voor de concentratie.

Het principe: hoe werkt capillaire elektroforese?

De scheiding berust op twee gelijktijdige verschijnselen:

  • Elektroforetische mobiliteit: geladen deeltjes bewegen door het elektrische veld naar de elektrode met tegengestelde lading. De snelheid hangt af van de lading-massaverhouding: kleine, sterk geladen ionen migreren sneller dan grote, zwak geladen deeltjes.
  • Elektro-osmotische flow (EOF): aan het binnenoppervlak van een ongecoate kwartscapillair ontstaan bij contact met buffer negatief geladen silanolgroepen. Deze trekken positieve ionen uit de buffer aan, die onder invloed van het elektrische veld naar de kathode bewegen en de gehele buffervloeistof meeslepen. De EOF fungeert als een "pomp" die alle deeltjes — ongeacht hun lading — in dezelfde richting voortstuwt.

De waargenomen migratiesnelheid van een deeltje is de som van zijn eigen elektroforetische mobiliteit en de elektro-osmotische flow. Hierdoor kunnen in één analyse kationen, neutrale moleculen en anionen na elkaar worden gedetecteerd: kationen het eerst (eigen migratie plus EOF in dezelfde richting), dan neutrale deeltjes (alleen meegevoerd door de EOF), en tot slot anionen (eigen migratie tegen de EOF in, maar door de sterke EOF toch meegesleurd).

Modi van capillaire elektroforese

Capillaire elektroforese is een verzamelnaam voor meerdere scheidingsmodi, die elk een ander scheidingsmechanisme benutten. In de praktijk worden vier modi het meest toegepast: CZE, CGE, MEKC en CIEF. De overige modi (CITP en CEC) zijn geschikt voor specifieke nichemoepassingen.

Modus Afkorting Scheidingsmechanisme Typische toepassing
Capillaire zone-elektroforese CZE Verschil in lading-massaverhouding Anorganische ionen, kleine moleculen, eiwitten
Capillaire gelelektroforese CGE Scheiding op grootte in een polymeermatrix DNA-fragmenten, eiwitten (SDS-CGE)
Micellaire elektrokinetische chromatografie MEKC Verdeling tussen buffer en micellen Neutrale en geladen moleculen samen
Capillaire iso-elektrische focusering CIEF Scheiding op iso-elektrisch punt (pI) Eiwitten, peptiden, antilichamen
Capillaire isotachoforese CITP Scheiding tussen leidende en volgende elektrolyt Opconcentreren van verdunde monsters
Capillaire elektrochromatografie CEC Combinatie van elektroforese en chromatografische partitie Neutrale en geladen organische moleculen

Capillaire zone-elektroforese (CZE)

De meest gebruikte en eenvoudigste modus. De capillair is gevuld met één homogene buffer en de scheiding berust uitsluitend op verschillen in lading-massaverhouding. CZE is breed inzetbaar voor de scheiding van ionen, organische zuren, peptiden en eiwitten.

Capillaire gelelektroforese (CGE)

De capillair is gevuld met een polymeernetwerk (vervangbare gelmatrix) dat als moleculaire zeef werkt. Grote moleculen bewegen langzamer door het netwerk dan kleine. CGE is de techniek achter geautomatiseerde DNA-fragmentanalyse en DNA-sequencing — de scheiding van DNA-fragmenten op lengte vormt de basis van capillaire sequencers zoals gebruikt bij Sanger-sequencing. Bij SDS-CGE worden eiwitten vooraf gedenatureerd met natriumdodecylsulfaat (SDS), waarna ze uitsluitend op moleculaire massa worden gescheiden — het capillaire equivalent van SDS-PAGE, maar dan volledig geautomatiseerd en zonder handmatige gelvoorbereiding.

Micellaire elektrokinetische chromatografie (MEKC)

Bij MEKC wordt aan de buffer een surfactant toegevoegd, doorgaans natriumdodecylsulfaat (SDS), dat boven de kritische micelconcentratie micellen vormt. Analytmoleculen verdelen zich op basis van hydrofobiciteit en lading tussen de waterige buffer en de hydrofobe kern van de micellen. Omdat de micellen zelf een elektroforetische mobiliteit bezitten die verschilt van die van de vrije analyt, ontstaat scheiding die zowel op polariteit als op lading is gebaseerd. MEKC is bij uitstek geschikt voor de gelijktijdige scheiding van neutrale en geladen verbindingen — een combinatie die met gewone CZE niet mogelijk is. Toepassingen omvatten de analyse van farmaceutische werkzame stoffen, conserveermiddelen in levensmiddelen en polycyclische aromatische koolwaterstoffen in milieumonsters.

Capillaire iso-elektrische focusering (CIEF)

Bij CIEF wordt de capillair gevuld met een mengsel van amfolyten — dragermoleculen met een reeks iso-elektrische punten — samen met het monstermengsel. Wanneer spanning wordt aangelegd, vormen de amfolyten een stabiele pH-gradiënt over de lengte van de capillair. Elke eiwitcomponent migreert naar de positie in de pH-gradiënt die overeenkomt met zijn eigen iso-elektrisch punt (pI), waarop de nettolading nul wordt en de migratie stopt. Vervolgens worden de gefocuste zones naar de detector gemobiliseerd door druktoepassing of chemische mobilisatie. CIEF levert nauwkeurige pI-bepalingen op tot op 0,01 pH-eenheid en wordt routinematig toegepast voor de karakterisering en kwaliteitscontrole van monoklonale antilichamen, biosimilars en andere biologische geneesmiddelen.

Chirale capillaire elektroforese

Voor de scheiding van enantiomeren wordt aan de bufferoplossing een chirale selector toegevoegd, doorgaans een cyclodextrine (α-, β- of γ-cyclodextrine, eventueel gederivatiseerd). De enantiomeren vormen voorbijgaande inclusiecomplexen met de selector en migreren daardoor met verschillende snelheden. Chirale CE is een aantrekkelijk alternatief voor chirale HPLC: lagere kosten, snel ontwikkelbaar en met klein monstervolume. Toegepast bij farmaceutische verbindingen, aminozuren en agrochemicaliën.

Monsterinjectie en stacking

Een monster wordt geïnjecteerd via een van twee methoden:

  • Hydrodynamische injectie — drukverschil over de capillair brengt een vast volume (typisch 1–50 nL) in de capillair. Onafhankelijk van de monstereigenschappen en daarom geschikt voor kwantitatieve analyse.
  • Elektrokinetische injectie — spanning wordt aangelegd terwijl het injectie-uiteinde in het monstervat staat. Geladen deeltjes migreren in de capillair, waarbij kleine en sterk geladen ionen worden bevoordeeld. Discrimineert tussen ionsoorten en is minder reproduceerbaar voor kwantificering.

Door slim gebruik te maken van verschillen in geleidingsvermogen kan een verdund monster bij injectie sterk worden geconcentreerd. Bij field-amplified sample stacking (FASS) wordt het monster opgelost in een buffer met lagere ionensterkte dan de scheidingsbuffer. Bij aanleggen van de spanning is het elektrische veld in het monster lokaal hoger, waardoor ionen sneller migreren tot ze de hoofdbuffer bereiken en daar afremmen en concentreren. Deze techniek kan de gevoeligheid met een factor 10 tot 1000 verbeteren en compenseert deels het kleine injectievolume van CE.

Detectiemethoden

De gescheiden deeltjes worden ter plaatse in de capillair gedetecteerd. De meest gebruikte detectiemethoden zijn:

  • UV-Vis-absorptie: de meest gebruikte methode. Detectie vindt plaats door een venster in de capillair waar de coating is verwijderd. Eenvoudig en breed toepasbaar, maar minder gevoelig door de korte optische weglengte (de capillairdiameter). Diode-array-detectie levert een volledig spectrum per piek.
  • Fluorescentiedetectie (LIF): laser-geïnduceerde fluorescentie biedt een veel hogere gevoeligheid dan UV, maar vereist dat de analyt fluorescerend is of gelabeld wordt. Standaard bij DNA-fragmentanalyse met fluorescente kleurstoffen.
  • Massaspectrometrie (CE-MS): koppeling aan een massaspectrometer levert naast scheiding ook identificatie op massa op. CE-MS is bijzonder geschikt voor polaire en geladen metabolieten — zoals aminozuren, nucleotiden en organische zuren — die op omgekeerde-fase LC-kolommen onvoldoende retineren. Krachtig voor metabolomics en eiwitanalyse; ion mobility spectrometry (IMS) voegt als gasfase-aanvulling een conformationele dimensie toe aan de CE-MS-workflow.
  • Contactloze geleidbaarheidsdetectie (C⁴D): capacitief gekoppelde geleidbaarheidsdetectie is geschikt voor kleine anorganische en organische ionen die geen UV absorberen.
  • Amperometrische detectie: voor elektroactieve verbindingen zoals catecholaminen, fenolen en bepaalde geneesmiddelen.

Capillaire elektroforese versus vloeistofchromatografie

Capillaire elektroforese en vloeistofchromatografie (HPLC) zijn complementaire scheidingstechnieken. De belangrijkste verschillen:

Eigenschap Capillaire elektroforese HPLC
Scheidingsprincipe Lading en grootte in elektrisch veld Verdeling tussen mobiele en stationaire fase
Scheidingsefficiëntie Zeer hoog (tot >1 miljoen schotels) Hoog (10.000–50.000 schotels)
Analysetijd Typisch 5–30 minuten (mode-afhankelijk) Typisch 10–60 minuten
Monstervolume Zeer klein (nanoliters) Microliters
Oplosmiddelverbruik Minimaal (alleen buffer) Aanzienlijk (organische oplosmiddelen)
Geschikt voor Ionen, eiwitten, DNA, chirale scheidingen Breed scala aan organische verbindingen
Het kleine monstervolume dat capillaire elektroforese vereist, maakt de techniek bijzonder geschikt voor de analyse van effluenten uit organ-on-chip-systemen, waar de beschikbare vloeistofhoeveelheden beperkt zijn.

Praktische aandachtspunten

Voor reproduceerbare CE-resultaten zijn enkele praktische aspecten cruciaal:

  • Joule-verwarming — de hoge spanning levert warmteontwikkeling in de buffer (Joule heating). Onvoldoende warmteafvoer veroorzaakt temperatuurgradiënten in de capillair, wat tot piekverbreding en verlies van resolutie leidt. Moderne CE-instrumenten gebruiken actieve koeling (lucht of vloeistof) en beperken de stroomsterkte tot enkele tientallen µA.
  • EOF-reproduceerbaarheid — de elektro-osmotische flow is gevoelig voor het oppervlak van de capillair. Adsorptie van eiwitten of veranderingen in pH veroorzaken EOF-drift en variabele migratietijden. Conditionering met NaOH-spoeling tussen analyses en het gebruik van interne standaarden helpen dit beheersbaar te houden.
  • Gecoate capillairen — voor eiwitten en peptiden worden capillairen gebruikt met een dynamische of permanente coating (polyacrylamide, polyethyleenglycol of polyamine) die eiwitadsorptie en EOF onderdrukt. Dit verbetert de reproduceerbaarheid sterk bij bio-analytische toepassingen.
  • Bufferverversing — tijdens een serie analyses verandert de buffersamenstelling door elektrolyse aan de elektroden. Periodieke buffervervanging is nodig voor consistente resultaten.

Microchip-CE en lab-on-a-chip

Bij microchip-elektroforese wordt de capillair vervangen door microkanalen geëtst in glas, kwarts of polymeer. Doordat de scheidingsafstand korter is en de warmteafvoer beter, kunnen analyses in seconden worden voltooid in plaats van minuten. Microchip-CE vormt de basis van veel lab-on-a-chip-systemen, zoals de Bioanalyzer en TapeStation voor DNA- en eiwitanalyse, en wordt steeds vaker toegepast in point-of-care diagnostiek.

Toepassingen van capillaire elektroforese

  • DNA-analyse: fragmentanalyse, genotypering en STR-typering (Short Tandem Repeat analyse) voor forensisch onderzoek en Sanger-sequencing via capillaire sequencers. Bij STR-analyse worden de aantallen herhalingen van korte DNA-motieven per locus bepaald; het resulterende profiel is persoonsspecifiek en vormt de basis van forensische DNA-identificatie en vaderschapsonderzoek. CE is hiervoor de mondiale standaard vanwege de hoge gevoeligheid, de nauwkeurige fragmentlengtebepaling en de volledig geautomatiseerde workflow.
  • Farmaceutische analyse: zuiverheidsbepaling, chirale scheiding van enantiomeren en bepaling van verontreinigingen in geneesmiddelen conform de Europese farmacopee.
  • Eiwit- en peptideanalyse: karakterisering van monoklonale antilichamen, ladingvariantanalyse en bepaling van het iso-elektrisch punt.
  • Klinische chemie: serumeiwitelektroforese (ook aangeduid als elektroforese bloedonderzoek) scheidt de eiwitten in bloedserum in vijf fracties: albumine en de alfa-1-, alfa-2-, bèta- en gammaglobulinen. Afwijkingen in dit patroon wijzen op specifieke aandoeningen — een verhoogde gammafractie kan duiden op een chronische infectie, ontsteking of monoklonale gammopathie; een verlaagde albumine- of alfa-1-fractie op leverproblematiek of alfa-1-antitrypsinedeficiëntie. Capillaire elektroforese heeft voor dit doel grotendeels de klassieke agarosegelelektroforese vervangen vanwege de hogere reproduceerbaarheid en automatisering. Verder wordt CE toegepast voor hemoglobinevarianten en HbA1c-bepaling.
  • Voedings- en milieuanalyse: bepaling van anorganische ionen, organische zuren en additieven in dranken, water en levensmiddelen.
  • Metabolomics: in combinatie met massaspectrometrie (CE-MS) voor de analyse van polaire en geladen metabolieten die met LC-MS lastig te scheiden zijn.

Voordelen en beperkingen

Capillaire elektroforese onderscheidt zich door een uitzonderlijk hoge scheidingsefficiëntie, een minimaal monster- en reagentiaverbruik en korte analysetijden. Wat betreft kosten zijn de instrumentatiekosten van CE vergelijkbaar met die van HPLC, maar de lopende kosten liggen aanzienlijk lager: de capillair is goedkoop en lang mee te gaan, en het bufferverbruik beperkt zich tot milliliters per analyse. De techniek is breed toepasbaar, van kleine ionen tot grote biomoleculen. Tegenover deze voordelen staan enkele beperkingen: de gevoeligheid van UV-detectie is door de korte optische weglengte lager dan bij HPLC, de reproduceerbaarheid van de migratietijd is gevoelig voor veranderingen aan het capillairoppervlak en Joule-verwarming, en de techniek vereist zorgvuldig onderhoud van de capillair en de buffers om consistente resultaten te behalen.

Gerelateerde onderwerpen bij Labvakhandel

Capillaire elektroforese sluit aan bij andere scheidings- en analysetechnieken in de kennisbank. Zie de artikelen over vloeistofchromatografie, ionenwisselchromatografie en next-generation sequencing voor verwante methoden in de moleculaire analyse. Voor benodigde verbruiksartikelen kunt u terecht in de categorie chromatografie. Voor de thermische stabiliteitsbepaling van therapeutische eiwitten en monoklonale antilichamen die via capillaire elektroforese worden gekarakteriseerd, zie DSC voor biomoleculen: eiwitontvouwing en Tm-bepaling.


Disclaimer: De informatie in dit artikel is bedoeld als algemene technische toelichting. Canidae Seal B.V. / Labvakhandel.nl aanvaardt geen aansprakelijkheid voor de toepassing van deze informatie in specifieke analytische, klinische of industriële situaties. Raadpleeg voor uw eigen toepassing altijd de geldende normen, vakliteratuur en de documentatie van fabrikant en apparatuur.

Bestellijst

Uw winkelwagen is leeg.